تولیدات دامی

شماره جاری

بر اساس شماره‌های نشریه

بر اساس نویسندگان

بر اساس موضوعات

نمایه نویسندگان

نمایه کلیدواژه ها

درباره نشریه

اهداف و چشم انداز

اعضای هیات تحریریه

اصول اخلاقی انتشار مقاله

بانک ها و نمایه نامه ها

پیوندهای مفید

پرسش‌های متداول

فرایند پذیرش مقالات

اطلاعات آماری نشریه

اخبار و اعلانات

بررسی اثر جایگزینی بخشی از دانه جو با تفاله چغندرقند با و بدون دانه برشته کانولا بر عملکرد، هیستومورفومتری و فراسنجه‌های تخمیری روده کوچک بره‌های پرواری

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 کارشناس

2 هیات علمی

3 هیات علمی دانشگاه شهید چمران اهواز

4 هیات علمی دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان

چکیده

تأثیر جایگزینی بخشی از دانه جو با تفاله چغندرقند با و بدون دانه برشته کانولا بر ریخت­شناختی، الگوی اسیدهای چرب فرار و pH روده کوچک با استفاده از 24 رأس بره نر عربی با میانگین وزن زنده 5/2± 7/23 کیلوگرم در یک طرح کاملاً تصادفی با آرایش فاکتوریل 2×2، عامل کربوهیدرات (جو یا تفاله چغندرقند) و عامل دانه برشته کانولا (با و بدون دانه برشته کانولا) به مدت 84 روز بررسی شد. جایگزینی بخشی از جو با تفاله چغندرقند موجب افزایش میانگین وزن روزانه شد (05/0>P). در بره­هایی که بخشی از دانه جو با تفاله چغندرقند جایگزین شده بود، ضخامت ماهیچه، عمق کریپت و غدد برونر در دوازدهه و ارتفاع کرک، تعداد کرک، طبقه عضلانی، ضخامت بافت پوششی، عمق کریپت و نسبت ارتفاع کرک به عمق کریپت در ژژنوم و ارتفاع کرک و ضخامت طبقه عضلانی در ایلئوم افزایش یافت (05/0>P). افزایش وزن روزانه، تعداد غدد برونر، شمار کرک­ها و ضخامت اپیتلیوم بره­های تغذیه شده با جیره­های حاوی دانه برشته کانولا، بیشتر بود (05/0>P). جایگزینی بخشی از دانه جو با تفاله چغندرقند و افزودن دانه برشته کانولا غلظت کل و غلظت هر کدام از اسیدهای چرب فرار را به صورت مجزا و همچنین pH مایع هضمی دوازدهه و ژژنوم را افزایش داد (05/0>P). بر اساس نتایج حاصل، جایگزینی دانه جو با تفاله چغندرقند و افزودن منبع چربی در جیره­های با کنسانتره بالا به علت تغییر در تراکم اسیدهای چرب فرار و pH مایع هضمی روده کوچک با توسعه ریخت­شناسی بافت روده کوچک، عملکرد بره‌ها را بهبود می بخشد.

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

Effect of partial replacement of barley seed with sugar beet pulp and addition of roasted canola seed on performance, the histomorphology and, fermentation parameters of the small intestine in fattening lambs

نویسنده [English]

  • sadegh asadollahi 1

چکیده [English]

The effect of partial replacement of barley with sugar beet pulp (SBP) with and without roasted canola seeds (RCS) on the performance, morphology, VFA and digesta pH in the small intestine of finishing lambs was investigated. In this study 24 Arbia male lambs with average body weight of 23.7±2.5 kg were used in a 2 × 2 factorial experiment over 84 days. Treatments were carbohydrate factor (barley or SBP) and roasted canola seed (with and without RCS). Partial replacement of barley with SBP significantly increased average daily gain (P < 0.05). Partial replacement of barley grain with SBP increased thickness of muscle, crypt depth and Brunner’s glands in duodenum and villus height, villous width, villus number, thickness of the epithelium, thickness of muscle, crypt depth and villous height to crypt depth in jejunum and villus height and thickness of muscle in ileum (p<0.05). Feeding lambs with diets containing RCS significantly increased Brunner’s glands,villus number and the thickness of the epithelium (P<0.05). Partial replacement of barely by SBP and adding RCS to diet increased significantly concentration individual VFA, total VFA and digesta pH in duodenum and jejunum. Based on the results, the performance of lambs improved as a result of partial replacement of barley with SBP and addition RCS to diets with high concentrate due to changes in the density of volatile fatty acids, digestive fluid pH of the small intestine and the development of the small intestine tissue morphology.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Fattening lambs
  • Fat sours
  • Morphology
  • Volatile Fatty Acids small intestine
مراجع
  1. Baldwin RL, McLeod KR, Klotz JL and Heitmann RN (2005) Rumen development, intestinal growth and hepatic metabolism in the pre and post weaning ruminant. Journal of Dairy Science 87: 55–65.
  2. Ben-Ghedalia D, Yosef E, Miron J, Est Y(1989) The effects of starch- and pectin-rich diets on quantitative aspects of digestion in sheep. Animal Feed Science and Technology 24: 289–298.
  3. Bodas R, Giraldez FJ, LÓpez S, Rodŕıguez AM and Mantecon AB (2007) Inclusion of sugar beet pulp in cereal-based diets for fattening lambs. Small Ruminant Research 7: 153-164.
  4. Dijkstra JL, Ellis E, Kebreab AB, Strathe S, Lopez J, France A and Bannink A (2012) Ruminal pH regulation and nutritional consequences of low pH. Animal Feed Science and Technology 172: 22– 33.
  5. Didier A and Jean-Claude M (1991) Changes in small intestinal mucosa morphology and cell renewal in suckling, prolonged-suckling, and weaned lambs. The American physiological society 3:811-818.
  6. Goodlad RA, Plumb JA and Wright NA(1987) The relationship between intestinal crypt cell proliferation and water absorption measured in vitro in the rat. Clinical Science 72: 297–304.
  7. Hristov AN, Ivan M, Rode LM and McAllister TA(2001)Fermentation characteristics and ruminal ciliate protozoal populations in cattle fed medium- or high-concentrate barleybased diets. Journal of Animal Science 79:515–524.
  8. Kenichi I and Yumeto F(2010) Preparation of fatty acid methyl esters for gas-liquid chromatography. Journal of Lipid Research 51:635-640.
  9. Kreikemeier KK, Hermon DL, Peters JP, Gross KL, Armendariz CK and Krehbiel CR(1990) Influence of dietary forage and feed intake on carbohydrase activities and small intestinal morphology of calves. Journal of Animal Science 68: 2916–2929.
  10. Lane MA and Jesse BW(1997)Effect of volatile fatty acid infusion in development of the rumen epithelium in neonatal sheep. Journal of Dairy Science 80: 740–746.
  11. Longenbach JI and Heinrichs AJ(1998) A review of the importance and physiological role of curd formation in the abomasum of young calves. Animal Feed Science and Technology 73: 85–97.
  12. McDonald DE, Pethick DW, Mullan BP and Hampson DJ(2001) Increasing viscosity of the intestinal contents alters small intestinal structure and intestinal growth, and stimulates proliferation of enterotoxigenic Escherichia coli in newly- weaned pigs. British journal nutrition 86:487-498
  13. Metzler BU and Mosenthin R(2008) A review of Interactions between Dietary Fiber and the Gastrointestinal Microbiota and Their Consequences on Intestinal Phosphorus Metabolism in Growing Pigs. Asian-Aust. Journal of Animal Science 21(4): 603 – 615.
  14. Mir PS, Bailey DRC, Mir Z, MorganJones SD, Douwes H, McAllister TA, Weselake RJ and Lozeman FJ(1997) Activity of intestinal mucosal membrane carbohydrases in of different breeds. Journal of Animal Science77: 441–446.
  15. Montagne L, Pluske JR and Hampson DJ(2003) A review of interactions between dietary fibre and the intestinal mucosa, and their consequences on digestive health in young nonruminant animals. Animal Feed Science and Technology108:95–117.
  16. Morin CL, Ling V and Bourassa D(1980) Small intes-tinal and colonic changes induced by a chemically de-fined diet. Dig. Dis. Science 25:123-128.
  17. NRC(2007). Nutrient Requirements of lamb.7th ed, National Academy Press. Washington, DC.U.S.A.
  18. Onetti SG, Shaver RD,  McGuire MA and Grummer RR(2001) Effect of Type and Level of Dietary Fat on Rumen Fermentation and Performance of Dairy Cows Fed Corn Silage-Based Diets. Journal of Dairy Science 84:2751–2759
  19. Pluske JR, Williams IH and Aherne FX (1996) Villous height and crypt depth in piglets in response to increases in the intake of cows’ milk after weaning. Journal of Animal Science 62:145–158.
  20. Sakata T, Hikosaka K, Shiomura Y and Tamate H(1980) Stimulatory effect of insulin on ruminal epithelial cell mitosis in adult sheep. British journal Nutrition 44:325-332.
  21. SAS(2005) Version 9.1 SAS. STAT user’s guide. Statistical Analysis Systems Institute, Cary,NC, USA.
  22. Strusińska D, Minakowski DG, Bomba G, Otrocka-Domagała I, Wiśniewska M and Tywończuk J (2009) Effect of whole cereal grains contained in the ration on calf performance and selected morphometric parameters of the rumen and small intestine. Journal of Animal Science 54(12): 540–551.
  23. Van der Klis JD and Van Voorst A(1993) The effect of carboxymethylcellulose (a soluble polysaccharide) on the rate of marker excretion from the gastrointestinal tract of broilers. Poultry Science 72: 503–512.
  24. Volek Z, Marounek M and Skrivanova V(2005) Replacing starch by pectin and inulin in diet of early-weaned rabbits: effect on performance, health and nutrient digestibility. Journal of Animal Science 14: 327–337.
  25. Wang YH,  Xu M, Wang FN,  Yu ZP, Yao JH, Zan LS and Yang FX(2009) Effect of dietary starch on rumen and small intestine morphology and digesta pH in goats. Livestock Science 122: 48–52.

تولیدات دامی
دوره 19، شماره 1
اردیبهشت 1396
صفحه 99-115
فایل ها
هم رسانی
ارجاع به این مقاله
آمار