تأثیر اسید ‌های چرب ژله رویال بر بیان ژن های درگیر در بتا اکسیداسیون در بلوغ برون تنی تخمک بز

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانشگاه علوم کشاورزی ومنابع طبیعی ساری

2 دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، تخصص: فیزیولوژی دام نر و ماده/ تولیدمثل دام

3 دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری

چکیده

تأثیر غلظت‌های مختلف اسیدهای چرب ژله رویال بر بلوغ برون‌تنی تخمک بز در قالب طرح کاملا تصادفی با شش تیمار در غلظت‌های بدون اسیدچرب ژله رویال، 125میکروگرم، 250میکروگرم، 500میکروگرم و 1000میکروگرم بر میلی‌لیتر، اسیدچرب ژله رویال و 50 میکرولیتر دی ام اس او، انجام شد. تخمدان‌های بز از کشتارگاه جمع‌آوری شده و به آزمایشگاه منتقل شدند و مجموعه تخمک کومولوس در محیط Medium 199 در غلظت‌های مختلف اسیدهای چرب ژله رویال کشت داده شدند. نتایج نشان داد که افزایش غلظت اسیدهای چرب ژله رویال تا 250 میکروگرم بر میلی‌لیتر، نرخ بلوغ برون‌تنی تخمک‌ها را افزایش داد. اما افزایش غلظت اسید های چرب در محیط بلوغ تا 1000میکروگرم بر میلی‌لیتر، کاهش معنی داری (05/0>P) را درنرخ بلوغ برون تنی نسبت به تیمار شاهد نشان داد. افزایش غلظت اسیدهای چرب ژله رویال تا 250 میکروگرم، به طور معنی داری (05/0>P) بیان نسبی ژن‌های αPPAR، کارنیتین پالمیتوییل ترانسفراز 1، کارنیتین پالمیتوییل ترانسفراز 2 و اسیل کوا دهیدروژناز را افزایش داد. از طرفی بیان نسبی ژن‌ها در غلظت 1000 میکروگرم به طور معنی داری کاهش یافت (05/0>P). می توان نتیجه گیری کرد که افزودن اسیدهای چرب ژله رویال به محیط بلوغ برون‌تنی تخمک وابسته به غلظت است و غلظت-های زیاد اسید های چرب تاثیر بدی بر نرخ بلوغ و بیان ژن های درگیر در سوخت و ساز چربی تخمک بز داشت.

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Effect of royal jelly’s fatty acids on expression of beta oxidation-related genes during in vitro maturation of goat oocytes

نویسندگان [English]

  • Marjan Esmaili 1
  • Zarbakht Ansari Pirsaraie 3
چکیده [English]

The aim of this study was to investigate the effect of different concentration of royal jelly’s fatty acids (0.0, 125, 250, 500, 1000 µg/ml and 50 µl DMSO) on in vitro maturation of goat oocyte. Goat ovaries were collected from local slaughterhouse and transported to the laboratory and COCs were cultured into the maturation media supplemented with different concentration of royal jelly’s fatty acids. The results indicated that the increase of royal jelly’s fatty acids concentration from control to 250µg/mL were significantly (P

کلیدواژه‌ها [English]

  • Royal jelly’s fatty acids
  • Goat oocyte
  • in vitro maturation
  • gene expression
  • lipid metabolism
1 . مراد یم ج، خادم ع، حسینی ا، وشکینی آ، اسدی الموتی ع، و محمدی سنگ چشمه ع (1393) اثر افزودن اسیدآلفا – لینولنیک به محیط کشت بلوغ برونتنی تخمک بر توانایی تکوین و کیفیت رویان حاصل از پارتنوژنز و لقاح برونتنی در بز. تولیدات دامی. صص. 83-75
2 . نیاورانی ا ر (1392) بیوشیمی هارپر. تالیف  پیتر. کنلی، دیوید. بندر، انتونی. ویل، رابرت. مورای، ویکتور. رادول. ویراست 29. انتشارات اشارت. ص 263-254.
 
3 . Aardema H, Vos PL, Lolicato F,. Roelen BAJ, Knijn HM,. Vaandrager AB, Helms JB and. Gadella BM (2011) Oleic Acid Prevents Detrimental Effects of Saturated Fatty Acids on Bovine Oocyte Developmental Competence. Biology of Reproduction 85: 62–69
4 . Agazzi A, Invernizzi G, Campagnoli A, Ferroni M, Fanelli A, Cattaneo D, Galmozzi A, Crestani M, Dell’OrtoVand Savoini G )2010(Effect of different dietary fats on hepatic gene expression in transition dairy goats. Small Ruminant Research 93: 31–40
5 . Bionaz, M, Chen Sh, Khan MJ and Loor JJ (2013)Functional Role of PPARs in Ruminants: Potential Targets for Fine-Tuning Metabolism during Growth and Lactation. PPAR Research28 pages
6 . Carro M, Buschiazzo J, Ríos GL, Oresti GM and Alberio RH (2013) Linoleic acid stimulates neutral lipid accumulation in lipid droplets of maturing bovine oocytes. Theriogenology 79: 687-694
7 . Dunning KR, Cashman K, Russell DL, Thompson JG, Norman RJ and Robker RL (2010) Beta-Oxidation Is Essential for Mouse Oocyte Developmental Competence and Early Embryo Development. Biology Of Reproduction  83: 909–918
8 . Elis S, Desmarchais A, Maillard V, Uzbekova S, Monget Ph and Dupont J (2015) Cell proliferation and progesterone synthesis depend on lipid metabolism in bovine granulosa cells. Theriogenology 83: 840–853
9 . Ebrahimi M, Rajion MA, Yong Meng G, Soleimani Farjam A, Oskoueian E and Jafari S (2015) Diet high in α-linolenic acid up-regulate PPAR-α gene expression in the liver of goats. Electronic Journal of Biotechnology.
10 . Froment P, Gizard F, Defever D, Staels B, Dupont J and Monget P (2006) Peroxisome proliferator-activated receptors in reproductive tissues: from gametogenesis to parturition. Journal of Endocrinology 189: 199–209.
11 . Gentile L, Monti M, Sebastiano V, Merico V, Nicolai R, Calvani M, Garagna S, Redi CA and Zuccotti M (2004) Single-cell quantitative RT-PCR analysis of CPT1 and CPT2 gene expression in mouse antral oocytes and in preimplantation embryos. Cytogenetic and Genome Research 105: 215–221.
12 . Hattori N, Nomoto H, Fukumitsu H, Mishima S and Furukawa SH (2007) Royal jelly and its unique fatty acid, 10-hydroxy-trans-2-decenoic acid, promote neurogenesis by neural stem/progenitor cells in vitro. Biomedical Research 28: 261-266
13 . Ito S, Nitta Y, Fukumitsu H, Soumiya H, Ikeno K, Nakamura T and Furukawa SH (2011) Antidepressant-Like Activity of 10-Hydroxy-Trans-2-Decenoic Acid, a Unique Unsaturated Fatty Acid of Royal Jelly, in Stress-Inducible Depression-LikeMouseModel. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine 2012: 1-6
14 . Ikeda I, Cha JY, Yanagita T, Nakatani N, Oogami K, Imaizumi K and Yazawa K (1998) Effects of dietary alpha-linolenic, eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids on hepatic lipogenesis and beta-oxidation in rats. Bioscience, Biotechnology, Biochemistry 62: 675-80
15 . Kubelka M, Motlík J, Schultz RM and Pavlok A (2000)  Butyrolactone I reversibly inhibits meiotic maturation of bovine oocytesWithout influencing chromosome condensation activity. Biology of Reproduction 62: 292-302
16 . Kim JY, Kinoshita M, Ohnishi M and Fukui Y (2001) Lipid and fatty acid analysis of fresh and frozen-thawed immature and in vitro matured bovine oocytes. Reproduction 122: 131–138
17 . Krey G, Braissant O, L’Horset F, Kalkhoven E, Perroud M, Parker M and Wahli M (1997) Fatty Acids, Eicosanoids, and Hypolipidemic Agents Identified as Ligands of Peroxisome Proliferator-Activated Receptors by Coactivator-Dependent Receptor Ligand Assay. Molecular Endocrinology 11: 779–791
18 . Leroy JLMR, Vanholder T, Mateusen B, Christophe A, Opsomer G, de Kruif A, Genicot G and Van Soom A (2005) Non-esterified fatty acids infollicular fluid of dairy cows and their effect on developmentalcapacity of bovine oocytes in vitro. Reproduction 130: 485–495.
19 . Moutsatsou P, Papoutsi Z, Kassi E, Heldring N, Zhao CH, Tsiapara A, Melliou E, Chrousos GP, Chinou I, Karshikoff A, Nilsson L and Dahlman-Wright K (2010)Fatty Acids Derived from Royal Jelly Are Modulators of Estrogen Receptor Functions. Plos one 5: 15594
20  . Marei WF,Wathes DC and Fouladi-Nashta AA (2010) Impact oflinoleic acid on bovine oocyte maturationand embryo development. Reproduction 139: 979–988.
21 . Montjean D, Entezami F, Lichtblau I, Belloc S, Gurgan T and Menezo Y (2012) Carnitine content in the follicular fluid and expression of the enzymes involved in b oxidation in oocytes and cumulus cells. Journal of Assisted Reproduction and Genetics 29: 1221–1225.
22 . McEvoy T G, Coull GD, Broadbent PJ, Hutchinson JS and Speake BK (2000) Fatty acid composition of lipids in immature cattle, pig and sheep oocytes with intact zona pellucida. Journal of Reproduction and Fertility 118: 163-170 .
23 . Sturmey RG, Reis A, Leese HJ and McEvoy TG (2009) Role of fatty acids in enery provision during oocyte maturation and early embryo development. Reproduction of Domestic Animals 44: 50-58.
24 . Sturmey RG and Leese HJ (2003) Energy metabolism in pig oocytes and early embryos.  Reproduction 126: 197-204.
25 . Sanchez–Lazo L, Brisard D, Elis S, Maillard V, Uzbekov R, Labas V, Desmarchais A, Papillier P, Monget Ph and Uzbekova S (2014) Fatty acid synthesis and oxidation in cumulus cellssupport oocyte maturation in bovine. Molecular Endocrinology 28: 1502-21.
26 . Sutton-McDowall ML, Gilchrist RB, Thompson JG (2010) The pivotal role of glucose metabolism in determining oocyte developmental competence. Reproduction. 139: 685–695.
27 . Songsase N (2012) Energy Metabolism Regulating Mammalian Oocyte Maturation. In: Molecular Mechanisms and Cytogenetic Diversity. Andrew Swan. Chapter 9. 173-186.
28 . Sabatini AG, Marcazzan GL, Caboni MF, Bogdanov S and Muradian LBA (2009) Quality and tandardization of Royal Jelly. Journal of ApiProduct and ApiMedical Science 1: 1-6.
29 . Schoonjans K, Staels B and Auwerx J (1996) The peroxisome proliferator activated receptors (PPARs) and their effects on lipid metabolism and adipocyte differentiation. Biochimica et Biophysica Acta 1302: 93-109.
30 . Sturmey RG, O'Toole PJ and Leese HJ (2006) Fluorescence resonance energy transfer   analysis of mitochondrial lipid association in the porcine oocyte. Reproduction 132: 829-837.