تولیدات دامی

شماره جاری

بر اساس شماره‌های نشریه

بر اساس نویسندگان

بر اساس موضوعات

نمایه نویسندگان

نمایه کلیدواژه ها

درباره نشریه

اهداف و چشم انداز

اعضای هیات تحریریه

اصول اخلاقی انتشار مقاله

بانک ها و نمایه نامه ها

پیوندهای مفید

پرسش‌های متداول

فرایند پذیرش مقالات

اطلاعات آماری نشریه

اخبار و اعلانات

مقایسه برنامه‌های هم‌زمان‌سازی فحلی با دونوع اسفنج پروژسترونی به‌همراه سطوح مختلف گونادوتروپین کوریونی اسب برعملکرد تولیدمثلی در میش‌های رومانوف تلقیح‌شده به‌روش لاپاروسکوپی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران. رایانامه: phd.fatemekhalilavi@asnrukh.ac.ir

2 نویسنده مسئول، گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران. رایانامه: tabatabaei@asnrukh.ac.ir

3 نویسنده مسئول، گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران. رایانامه: atowhidi@ut.ac.ir

4 گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی‌و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران. رایانامه: mortezamamouei@asnrukh.ac.ir

5 گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران. رایانامه: j_fayazi@asnrukh.ac.ir

10.22059/jap.2026.400000.623865

چکیده

هدف: باروری یک عامل اساسی سودآوری و پایداری شرکت­های پرورش گوسفند و هم‌چنین یک معیار انتخاب ارزشمند در مطالعات اصلاح ژنتیکی است. گوسفند رومانوف از بهترین نژادهای معروف جهان از نظر باروری است. نتایج بسیار خوب در مورد باروری گوسفند رومانوف توجه بسیاری از پرورش‌دهندگان را به خود جلب کرده است. لزوم به‌کارگیری فناوری­های تولیدمثل برای گوسفند رومانوف که در ایران نسبت به تغییرات فصلی کاهش در عملکرد تولیدمثلی نشان داده است، ضروری به‌نظر می­رسد. به‌کارگیری روش‌های صحیح مدیریت در فصل غیرتولیدمثل برای بالابردن صرفه اقتصادی به‌ویژه در نژادهای واردشده به کشور از اهمیت بالایی برخوردار است. این مطالعه با هدف ارزیابی اثر به‌کارگیری پروتکل­های کوتاه‌مدت هم‌زمان‌سازی فحلی پنج روزه با استفاده از دو برند اسفنج با مقادیر مختلف هورمون eCG بر بازده تولیدمثلی میش‌های رومانوف در فصل غیرتولیدمثلی انجام گرفت.
روش پژوهش: در این مطالعه از 90 میش دو تا پنج‌ساله نژاد رومانوف با میانگین وزنی 2/1±8/38 کیلوگرم استفاده شد. میش‌ها به‌مدت 5 روز با اسفنج اسپانجاوت، حاوی 60 میلی‌گرم مدروکسی پروژسترون استات (45 رأس) یا اسفنج فلوروجست، حاوی 40 میلی‌گرم فلوروجستون استات (45 رأس) هم‌زمان­سازی شدند و هنگام اسفنج‌‌برداری، هر کدام از گروه‌ها به سه زیرگروه 15 تایی تقسیم شدند و به‌ترتیب سطوح 300، 450 و 600 واحد بین­المللی هورمون eCG دریافت نمودند.
یافته­های پژوهش: اسفنج اسپانجاوت موجب کاهش معنی‌دار ترشحات مخاطی و چسبندگی مهبل در درجات 1 و 2 نسبت به اسفنج فلوروجست شد. درصد باروری، زایش و بره‌زایی در گروه تیمارشده با اسفنج اسپانجاوت همراه با 600 واحد هورمون eCG عملکرد بهتری داشتند (05/0>P)، درحالی‌که درصد دوقلوزایی، سقط و میش‌های قسر تحت تأثیر قرار نگرفتند. بیش‌ترین غلظت پروژسترون سرم خون طی 48 ساعت از خروج اسفنج، مربوط به تیمار اسپانجاوت همراه با 300 واحد eCG بود. در تیمارهای دریافت‌کننده 450 و 600 واحد eCG، سطح هورمون استروژن در زمان‌های 24 و 48 ساعت پس از خروج اسفنج، به‌طور معنی‌داری بالاتر بود. تحلیل سود به هزینه نشان داد که استفاده از اسفنج اسپانجاوت به‌همراه 600 واحد هورمون eCG، بیش‌ترین سوددهی را ‌دنبال دارد.
نتیجه­گیری: یافته‌های پژوهش نشان ‌دادند که عملکرد تولیدمثلی تیمار کوتاه‌مدت اسفنج از دو برند مشابه بود. هم‌چنین، تیمارهای دریافت‌کننده 450 و 600  واحد eCG دارای اثراتی مشابه در بهبود باروری بودند. از نظر اقتصادی، به‌کارگیری اسفنج فلوروجست به صرفه‌تر می‌باشد و می‌توان از 450 واحد هورمون به‌همراه این اسفنج برای بالابردن بازده تولید مثلی و سود اقتصادی در گله‌های داشتی استفاده کرد. اما اگر هدف از به‌کارگیری روش‌های هم‌زمان‌سازی فحلی بالابردن نرخ دوقلوزایی باشد، بهترین گزینه اسفنج اسپانجاوت با 600 واحد eCG می‌باشد.

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

Comparison of estrous synchronization protocols using two types of progesterone sponges along with different levels of equine chorionic gonadotropin on reproductive performance in laparoscopically inseminated Romanov ewes

نویسندگان [English]

  • fatemeh khalilavi 1
  • Saleh tabatabaei 2
  • armin towhidi 3
  • morteza mamoei 4
  • jamal fayezi 5

1 Department of Animal Science, Faculty of Animal Science and Food Technology, Agricultural Sciences and Natural Resources University of Khuzestan, Mollasani, Iran. E-mail: phd.fatemekhalilavi@asnrukh.ac.ir

2 Corresponding Author, Department of Animal Science, Faculty of Animal Science and Food Technology, Agricultural Sciences and Natural Resources University of Khuzestan, Mollasani, Iran. E-mail: tabatabaei@asnrukh.ac.ir

3 Corresponding Author, Department of Animal Science, Faculty of Agriculture and Natural Resources, University of Tehran, Karaj, Iran. E-mail: atowhidi@ut.ac.ir

4 Department of Animal Science, Faculty of Animal Science and Food Technology, Agricultural Sciences and Natural Resources University of Khuzestan, Mollasani, Iran. E-mail: mortezamamouei@asnrukh.ac.ir

5 Department of Animal Science, Faculty of Animal Science and Food Technology, Agricultural Sciences and Natural Resources University of Khuzestan, Mollasani, Iran. E-mail: j_fayazi@asnrukh.ac.ir

چکیده [English]

Objective: Fertility is a fundamental factor for the profitability and sustainability of sheep breeding companies and is also a valuable selection criterion in genetic improvement studies. The Romanov sheep is one of the best-known breeds worldwide in terms of fertility. Excellent results regarding the fertility of Romanov sheep have attracted the attention of many breeders. It seems essential to apply reproductive technologies to Romanov sheep in Iran, which have shown a seasonal decline in reproductive performance. The application of proper management methods during the non-breeding season to increase economic efficiency, especially in imported breeds, is of high importance. This study aimed to evaluate the effect of using short-term 5-day estrus synchronization protocols with two sponge brands containing different doses of eCG hormone on the reproductive performance of Romanov ewes during the non-breeding season.
Method: In this study, 90 Romanov ewes aged 2 to 5 years with an average weight of 38.8±1.2 kg were used. The ewes were synchronized for 5 days using either the Esponjavet sponge containing 60 mg medroxyprogesterone acetate (45 ewes) or the Fluorogest sponge containing 40 mg flurogestone acetate (45 ewes). Upon sponge removal, each group was subdivided into three subgroups of 15 ewes each and received 300, 450, or 600 international units of eCG hormone.
Results: The Esponjavet sponge significantly reduced mucosal secretions and vaginal adhesions in grades 1 and 2 compared to the Fluorogest sponge (P<0.05). Fertility, lambing, and prolificacy rates were higher in the group treated with Esponjavet sponge combined with 600 IU eCG (P<0.05), while twinning rate, abortion, and barren ewes were not affected. The highest serum progesterone concentration within 48 hours after sponge removal was observed in the Esponjavet treatment combined with 300 IU eCG. In treatments receiving 450 and 600 IU eCG, estrogen levels at 24 and 48 hours post-sponge removal were significantly higher (P<0.05). Cost-benefit analysis showed that the use of the Esponjavet sponge with 600 IU eCG yielded the highest profitability.
Conclusion: The results indicated that the reproductive performance of short-term sponge treatments from the two similar brands was comparable. Treatments receiving 600 and 450 IU eCG had similar effects on improving fertility. Economically, the use of the Fluorgest sponge is more cost-effective, and 450 IU eCG combined with this sponge can be used to improve reproductive efficiency and economic profit in breeding flocks. However, if the goal of estrus synchronization protocols is to increase twinning rate, the best option is the Esponjavet sponge with 600 IU of eCG.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Estrous synchronization
  • Romanov
  • Short-term protocols
  • Sponge
مراجع
Reference
Akoz, M., Bülbül, B., Ataman, M. B., & Dere, S. (2006). Induction of multiple births in akkaraman cross-bred sheep synchronized with short duration and different doses of progesterone treatment combined with PMSG outside the breeding season. Bulletin of the Veterinary Institute in Pulawy, 50, 97-100.
Ataman, M. B., Akoz, M., & Akman, O. (2006). Induction of synchronized oestrus in akkaraman cross-bred ewes during breeding and anestrus seasons. The use of short-term and long-term progesterone treatments. Revue de Médecine Vétérinaire, 157(5), 257-260.
Awel, H., Eshetu, L., Tadesse, G., Birhanu, A., & Khar, S. K. (2009). Estrus synchronization in sheep with synthetic progestagens. Tropical Animal Health and Production, 41, 1521-1524. https://doi.org/10.1007/s11250-009-9342-7
Botha, H. K.,  Niekerk,  C. H., & Pagel,  R. F. E.  (1975).  Influence  of  synchronization  of  the  oestrous  period  PMSG  administration  and  flushing  on oestrus  and  conception  of  south  African  mutton  merinos. Journal of Animal Science, 5, 231-233.
Bulent bulbal, M. A., Ataman, M. B., & Dere, S. (2006). Inductiion of multiple briths in Akkaraman cross-bred sheep synchronized with short duration and different doses of progesterone treatment combined with PMSG outside the breeding season. Bulletin of the Veterinary Institute in Pulawy, 50, 97-100.
Dixon, A. B., Kinhts, M., Pate, J. L., Lewis, P. E., & Inskeep, E. K. (2006). Reproductive performance of ewes after 5-daytreatment with intravaginal inserts containing progesterone in combination with injection of prostaglandin F2α. Reproduction in Domestic Animal, 41, 142-148. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2006.00656.x
Dumitrescu, I., Stoica, A., Culea, C., & Ristea, P. (1985). Induction of oestrus in ewes treated with synthetic hormones. Animal Breeding Abstracts, 53, 7605.
Elisea, J. A. Q., Cruz, U. M., Valenzuela, F. D. A., Calderon, A. C., Reyna, A. G., Magana. F. A.L., Navarro, S. A. S., & Reyes, L. A. (2011). The effects of time and dose of pregnant mare serum gonadotropin (PMSG) on reproductive efficiency in hair sheep ewes. Tropical Animal Health and Production, 43, 1567-1573. https://doi.org/10.1007/s11250-011-9843-z
Fahmy, M. H., Robert, S., & Castonguay, F. (1997). Ewe and lamb behaviour at parturition in prolific and non-prolific sheep. Canadian Journal of Animal Science, 77, 9-15. https://doi.org/10.4141/A96-014
Fallah, A. H., & Farzaneh,  N. (2007). Effect of CIDR and different does of PMSG on pregnancy and lambing rate out of breeding season in Balouchi ewes. Journal of Animal and Veterinary Advances, 6(10), 1167-1171.
Fonseca, J. F., Bruschi, J. H., Santos I. C. C., Viana, J. H. M., & Magalhaes, A. C. M. (2005). Induction of estrus in non-lactating dairy goats with different estrous synchrony protocols. Animal Reproduction Science, 85, 117-124. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2004.04.038
Gootwine, E. (2020). Invited review: Opportunities for genetic improvement toward higher prolificacy in sheep. Small Ruminant Research, 186, 106090. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2020.106090
Güner, B., & Karakaya Bilen, E. (2022). Comparison of fertility parameters in Romanov sheep synchronized with progesterone‑based protocol plus PMSG or GnRH. Turkish Journal of Veterinary Research, 6(2), 61-66.
Hashim, N. H., Syafnir, S., & Sembiring, M. (2013). Time of PMSG administration: Effect on progesterone and estradiol concentration in synchronized ewes. Biomedical Research, 24(1), 7-12.
Husein, M. Q., & Haddad, S. G. (2006). Anew approach to enhance reproductive performance in sheep using royal jellyin comparison with equine chorionic gonadotropin. Animal Reproduction Science, 93, 24-33. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2005.05.016
Husein, M. Q., & Kridli, R. T. (2002). Reproductive responses following royal jelly treatment administered orally or intramuscularly into progesterone-treated Awassi ewes. Animal Reproduction Science, 74(2), 45-53. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(02)00158-2
Karagiannidis, A., Varsakeli, S., Karatzas, G., & Brozos, C. (2001). Effect of time of artificial insemination on fertility of progestagen and PMSG treated indigeneous Greek ewes, during non-breeding season. Small Ruminant Research, 39, 67-71. https://doi.org/10.1016/S0921-4488(00)00186-1
Kuru, M., Kuru, B. B., Kacar, C., Demir, M. C., & Cetin, N. (2022). Effect of oestrus synchronization with different lengths of progesterone‑impregnated sponges and equine chorionic gonadotropin on reproductive efficiency in Romanov ewes during the non‑breeding season. Acta Veterinaria Brno, 91(3), 243-250.
Lukanina, V. A., Chinarov, R. Yu., & Singina, G. N. (2023). The effect of hormonal stimulation scheme and season on the efficiency of estrus synchronization in Romanov ewes (Ovis aries L.). Sel’skokhozyaistvennaya Biologiya, 58(2), 333-344.
Martinez-Ros, P., Astiz, S., Garcia-Rosello, E., Rios-Abellan, A., & Gonzalez-Bulnes, A. (2018b). Effects of short-term intravaginal progestagens on the onset and features of estrus, preovulatory LH surge and ovulation in sheep. Animal Reproduction Science, 197, 317-323. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2018.09.015
Martinez-Ros, P., Lozano, M., Hernandez, F., Tirado, A., Rios-Abellan, A., López-Mendoza, M. C., & Gonzalez-Bulnes, A. (2018a). Intravaginal device-type and treatment-length for ovine estrus synchronization modify vaginal mucus and microbiota and affect fertility. Animals, 8(12), 226. https://doi.org/10.3390/ani8120226
Maxwell, W. M. C., Evans G., Rhodes, S. L., Hillard, M. A., & Bindon, B. M. (1993). Fertility of superovulated ewes after intrauterine or oviducal insemination with low numbers of fresh or frozen-thawed spermatozoa. Reproductive Fertility Development, 5, 57-63. https://doi.org/10.1071/RD9930057
Menchaca, A., Cuadro, F., dos Santos-Neto, P. C., Bosolasco, D., Barrera, N., de Brun, V., & Crispo, M. (2018). Oocyte developmental competence is improved by relatively greater circulating progesterone concentrations during preovulatory follicular growth. Animal Reproduction Science, 195, 321-328. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2018.06.015
Menegatos, J., Chadio, S., & Kauskoura, T. (2003). Endocrine event during the pre-estruos Period and the subsequent estrous cycle in ewes after estrous synchronization. Theriogenology, 59, 1533-1543. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(02)01229-1
Michel, H., Vanmontfort, D., Dewil, E., & Decuypere, E. (1998). Genetic variation of prenatal survival in relation to ovulation rate in sheep: a review. Small Ruminant Research, 29, 129-142. https://doi.org/10.1016/S0921-4488(97)00118-3
Miljkovic, V., Petrujkic, T., Vujosevic, J., Mrvos, P., Mihajlovksi, P., Predojevic, M., Naumov, N., Tanev, D., Stanojevic, T., & Jovanovic, V. (1989).  Contemporary  aspects  of  physiology  of  reproduction  and  artificial insemination in small ruminants. Veterinary Glas, 43, 875-882.
Monika,  P. (2001).  Ovine  reproduction.  In:  Compendium  of  animals  reproduction.  Monika  P.  (Ed),  İntervet International. B.V. Holand. PP: 125-145.
Naderpour, H., Yadi, J., Ghazikhani Shad, A., & Sirjani, M. A. (2012). The effects of  three methods of synchronization on estrus induction and hormonal profile in Kalkuhi ewes. A comparison study. African Journal and Bioechnology,11(5), 530-533. https://doi.org/10.5897/AJB11.1347
Najafi, G., Cedden, F., Mojtahedi, S., & Aliverdinasab, R. (2014). Estrus  synchronization and twinning  rate of  Ghezel ewes  treated  with  CIDR  and  PMSG  during  the  breeding season. Online Journal of Animal and Feed Research, 6, 144-149.
Nakano, F. Y., Leão, R. D. B. F., & Esteves, S. C. (2015). Insights into the role of cervical mucus and vaginal pH in unexplained infertility. Medical ExPress, 2. https://doi.org/10.5935/MedicalExpress.2015.02.01
Noel, B., Bister, J. L., Pierquin, B., & Paquay, R. (1994). Effect of FGA and PMSG on follicular growth and LH secretion in Suffolk ewes. Theriogenology, 41, 719-727. https://doi.org/10.1016/0093-691X(94)90178-3
Nosrati, M., Tahmorespoor, M., Vatandoost, M., & Behgar, M. (2011). Effects of PMSG doses on reproductive performance of Kurdi ewes artificially inseminated during breeding season.  Iranian Journal  of Applied Animal Science, 1(2), 125-129.
Oyedipe, E. Pathiraja, N., & Gyang, E. (1989). Effect of dose of pregnant mare serum gonadotrophin on estrus parameters,  ovulation  rate  and  peripheral  progesterone  concentrations in Yankasa ewes. Animal Reproduction Science, 20(4), 255-264. https://doi.org/10.1016/0378-4320(89)90079-3
Salmon, S., & Maxwell, W. M. C. (2000). Storage of ram semen. Animal Reproduction Science, 62(1-3), 77-111.
Sanchez, E. J. (2005). Melatonin-estrogen interaction in breast cancer. Journal of Pineal Research, 38, 217-222. https://doi.org/10.1111/j.1600-079X.2004.00158.x
Swelum, A. A. A., Saadeldin, I. M., Moumen, A. F., Ali, M. A., & Alowaimer, A. N. (2018). Efficacy of controlled internal drug release (CIDR) treatment durations on the reproductive performance, hormone profiles, and economic profit of Awassi ewes. Small Ruminant Research, 166, 47-52. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2018.07.010
Timurkan, H., & Yildiz, H. (2005). Synchronization of oestrus in Hamdani ewes: The use of different PMSG doses. Bull Veterinary Inst Pulawy, 49, 311-314.
Turk, G., Gur, S., Sonmez, M., Bozkurt, T., Aksu, E. H., & Aksoy, H. (2008). Effect of exogenous GnRH at the time of artificial insemination on reproductive performance of Awassi ewes synchronized with progestagen-PMSG-PGF2α combination. Reproduction in Domestic Animals, 48, 308-313. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2012.02089.x
Villarroel, A., Martino, A., Bondurant, R. H., Deletang, F., & Sischo, W. M. (2004). Effect of  post-insemination supplementati on with PRID on pregnancy in repeat-breeder Holstein cows. Theriogenology, 61, 1513-1520. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2003.09.007
Vinoles, C., Forsberg, M., Banchero, G., & Rubianes, E. (2001). Effect of long-termand short term progestagen treatment on follicular development and preganancy rate in cyclic ewes. Theriogenology, 55, 993-1001. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(01)00468-7
Vlahek, I., Kabalin, A. E., Mencik, S., Maljkovi, M. M., Piplica, A., Kabalin, H., Savori, J., & Susi, V. (2021). The effect of non-genetic factors on the birth weight of Romanov sheep. Veterinarski Arhiv, 91(6), 615-624. https://doi.org/10.24099/vet.arhiv.1487
Vlahek, I., Susi, V., Maljkovic, M. M., Piplica, A., Savori, J., Faraguna, S., & Kabalin, H. (2023). Non-genetic factors affecting litter size, age at first lambing and lambing interval of Romanov sheep in Croatia. Veterinarska Stanica, 54(3), 311-320. https://doi.org/10.46419/vs.54.3.6
Vostry, L., Milerski, M., Schmidova, J., & Vostra-Vydrova, H. (2018). Genetic diversity and effect of inbreeding on litter size of the Romanov sheep. Small Ruminant Research, 168, 25-31. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2018.09.004
Wang, Y., Chi, Z., Jia, S., Zhao, S., Cao, G., Purev, C., & Bin Tong, B. (2023). Effects of novel variants in BMP15 gene on litter size in Mongolia and Ujimqin sheep breeds. Theriogenology, 198(1), 1-11. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2022.12.005
Yu, Y.S., Luo, M. J., Han, Z. B., Li, W., Sui, H. S., & Tan, J. H. (2005). Serum and follicular fluid steroid levels as related to follicular development and granulose cell apoptosis during the estrus cycle of goats. Small Ruminant Research, 57, 57-65. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2003.12.001
Zarkawi, M., Al-Merestani, M. R., & Wardeh, M. F. (1999). Induction of synchronized oestrous and early Pregnancy diagnosis in Syrian Awassi ewes, outside the breeding season.  Small Ruminant Research, 33(1), 99-102. https://doi.org/10.1016/S0921-4488(98)00137-5
Zeleke, M., Greyling, L. M. J., & Schwalbach, T. (2005). Effect of progestagen and PMSG on oestrous synchronization and fertility in dorper ewes during the transition period. Small Ruminant Research, 56(3), 47-53. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2004.05.003
تولیدات دامی
دوره 28، شماره 1
فروردین 1405
صفحه 141-154
فایل ها
هم رسانی
ارجاع به این مقاله
آمار