تولیدات دامی

شماره جاری

بر اساس شماره‌های نشریه

بر اساس نویسندگان

بر اساس موضوعات

نمایه نویسندگان

نمایه کلیدواژه ها

درباره نشریه

اهداف و چشم انداز

اعضای هیات تحریریه

اصول اخلاقی انتشار مقاله

بانک ها و نمایه نامه ها

پیوندهای مفید

پرسش‌های متداول

فرایند پذیرش مقالات

اطلاعات آماری نشریه

اخبار و اعلانات

بهینه‌سازی پاسخ‌های عملکردی و فیزیولوژیکی جوجه‌های گوشتی آرین براساس انرژی قابل‌متابولیسم، پروتئین، لیزین و متیونین+ سیستئین جیره با روش تاگوچی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 نویسنده مسئول، گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران. رایانامه: mo.sedghi@iut.ac.ir

2 گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران. رایانامه: zahra.sarrami@alumni.iut.ac.ir

3 گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران. رایانامه: r.ghasemi1@alumni.iut.ac.ir

4 گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران. رایانامه: mojtaba.abbasi96@alumni.iut.ac.ir

5 گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران. رایانامه: esmail.mohammadi@ag.iut.ac.ir

10.22059/jap.2026.406624.623880

چکیده

هدف: صنعت طیور در سال‌های اخیر علاقه‌ فزاینده‌ای به استفاده از جیره‌های کم‌پروتئین نشان داده است که این امر به‌دلیل مزایای اقتصادی و زیست‌محیطی، از جمله کاهش هزینه خوراک و کاهش کلی دفع نیتروژن می‌باشد. با این‌حال، کاهش سطح پروتئین جیره می‌تواند منجر به کاهش میزان اسیدهای آمینه ضروری گردد. از این‌رو، طی چندین دهه گذشته، پژوهش‌های گسترده‌ای به‌منظور بررسی رابطه بین مواد مغذی جیره، عملکرد تولیدی و برآورد نیازهای تغذیه‌ای در جوجه‌های گوشتی به‌ویژه در زمینه انرژی قابل‌متابولیسم، پروتئین و اسیدهای آمینه ضروری انجام شده است. هدف اصلی تمامی این مطالعات، ارائه برآوردهای دقیق‌تر از نیازهای تغذیه‌ای به‌منظور بیشینه‌سازی پتانسیل ژنتیکی رشد و عملکرد در طیور می‌باشد.
روش پژوهش: به‌منظور بررسی اثر سطوح انرژی قابل‌متابولیسم، پروتئین، متیونین+ سیستئین و لیزین جیره بر عملکرد و پاسخ‌های فیزیولوژیک جوجه‌های آرین، تعداد 2160 قطعه جوجه (مخلوطی از نر و ماده) یک‌روزه در قالب آزمایش فاکتوریل 4×4×4×4 با 16 تیمار و پنج تکرار و 27 جوجه در هر تکرار مورداستفاده قرار گرفتند. سطوح مواد مغذی معادل 97، 100، 103 و 106 درصد نیاز توصیه‌شده در کاتالوگ آرین تنظیم شدند. شاخص‌های عملکردی از جمله افزایش وزن، مصرف خوراک و ضریب تبدیل خوراک برای صفر تا 21 روز و 22 تا 42 روزگی اندازه‌گیری شد. به‌منظور ارزیابی فراسنجه‌های بیوشیمیایی خون در سن ۳۵ روزگی، از یک پرنده در هر تکرار خون‌گیری انجام شد. هم‌چنین جهت سنجش تیتر تولید آنتی‌بادی علیه گلبول قرمز گوسفندی، در سنین ۲۸ و ۳۵ روزگی نمونه خون گرفته شد. در پایان دوره، از هر تیمار پنج پرنده کشتار شد و نمونه‌برداری بافتی صورت گرفت. ویژگی‌های بافت‌شناسی شامل ارتفاع و عرض پرز، عمق کریپت، نسبت ارتفاع پرز به عمق کریپت و ضخامت لایه ماهیچه‌ای اندازه‌گیری گردید.
یافته‌ها: نتایج نشان داد سطوح بهینه مواد مغذی برای افزایش وزن روزانه در کل دوره پرورش، سطح 103 درصد انرژی و لیزین، سطح 106 درصد پروتئین و سطح استاندارد متیونین+ سیستئین بود. سطح استاندارد انرژی و پروتئین، سطح 97 درصد نیاز متیونین+ سیستئین و سطح 103 درصد نیاز لیزین، سطوح بهینه برای مصرف خوراک بود. با افزایش سطح انرژی و پروتئین جیره، ضریب تبدیل خوراک و شاخص عملکرد اروپایی بهبود یافت. غلظت کلسترول و تری­گلیسیرید خون پرندگان نیز با افزایش سطح انرژی جیره، روند افزایشی داشت. با افزایش انرژی و کاهش پروتئین جیره، غلظت پروتئین با چگالی بالا (HDL) روند افزایشی نشان داد. سطوح بالای انرژی و پروتئین سبب افزایش غلظت پروتئین، گلوبولین و آنزیم‌های کبدی در سرم خون شد. هم‌چنین ارتفاع و مساحت پرزهای روده با افزایش سطح اسیدآمینه لیزین روندی رو به افزایش داشت.
نتیجه‌گیری: براساس نتایج حاصل، افزایش سطح انرژی قابل‌متابولیسم جیره به بیش از 103 درصد نیاز ممکن است منجر به افت عملکرد و مصرف خوراک شود. افزایش سطح پروتئین تا 106 درصد نیاز، نتایج عملکردی خوبی به‌همراه دارد و افزایش سطح پروتئین تا 103 درصد نیاز از نظر اقتصادی توصیه می‌شود. هم‌چنین برای اسیدهای آمینه متیونین+ سیستئین و لیزین به‌ترتیب سطوح استاندارد و 103 درصد نیاز توصیه می‌شود.

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

Optimization of Functional and physiological responses of arian broiler chickens based on dietary ME, protein, lysine, and methionine +cysteine using Taguchi method

نویسندگان [English]

  • Mohammad Sedghi 1
  • zahra sarrami 2
  • Razie ghasemi 3
  • Mojtaba Abbasi 4
  • Ishmael Mohammadi 5

1 Corresponding Author, Department of Animal Sciences, College of Agriculture, Isfahan University of Technology, Isfahan, Iran. E-mail: mo.sedghi@iut.ac.ir

2 Department of Animal Sciences, College of Agriculture, Isfahan University of Technology, Isfahan, Iran. E-mail: zahra.sarrami@alumni.iut.ac.ir

3 Department of Animal Sciences, College of Agriculture, Isfahan University of Technology, Isfahan, Iran. E-mail: r.ghasemi1@alumni.iut.ac.ir

4 Department of Animal Sciences, College of Agriculture, Isfahan University of Technology, Isfahan, Iran. E-mail: mojtaba.abbasi96@alumni.iut.ac.ir

5 Department of Animal Sciences, College of Agriculture, Isfahan University of Technology, Isfahan, Iran. E-mail: esmail.mohammadi@ag.iut.ac.ir

چکیده [English]

Objective: In recent years, the poultry industry has shown increasing interest in low-protein diets due to their economic and environmental benefits, including reduced feed costs and lower nitrogen excretion. However, reducing dietary protein levels may lead to deficiencies in essential amino acids. Therefore, extensive research over recent decades has focused on evaluating the relationships between dietary nutrients, production performance, and nutritional requirements of broiler chickens, particularly metabolizable energy, protein, and essential amino acids. The primary objective of these studies has been to provide more accurate estimations of nutritional requirements to maximize the genetic potential for growth and performance in poultry.
Method: To investigate the effects of dietary metabolizable energy, protein, methionine+ cysteine, and lysine levels on performance and physiological responses of Arian broiler chickens, a total of 2,160 one-day-old chicks (mixed sex) were used in a 4×4×4×4 factorial experiment with 16 treatments, 5 replicates per treatment, and 27 birds per replicate. Nutrient levels were formulated at 97, 100, 103, and 106% of the recommended requirements according to the Arian catalog. Performance parameters, including body weight gain, feed intake, and feed conversion ratio (FCR), were recorded. At 35 days of age, blood samples were collected from one bird per replicate for the serum biochemical parameters (cholesterol, triglycerides, HDL, LDL, albumin, globulin, ALP, AST, and ALT). Antibody titers against sheep red blood cells (SRBC) were measured at 28 and 35 days of age. At the end of the experimental period, five birds per treatment were slaughtered to determine carcass, liver, and lymphoid organ weights. Additionally, intestinal tissue samples were collected from one bird per replicate to evaluate micromorphological traits, including villus height and width, crypt depth, villus height to crypt depth ratio, and muscular layer thickness.
Results: The results of statistical analysis indicated that the optimal nutrient levels for maximizing daily weight gain over the entire rearing period were 103% of energy and lysine requirements, 106% of protein requirements, and the standard level of methionine+ cysteine. Standard levels of energy and protein, 97% of methionine +cysteine requirements, and 103% of lysine requirements were optimal for feed intake. Increasing dietary energy and protein levels improved the FCR and the European production efficiency index. Serum cholesterol and triglyceride concentrations increased with increasing dietary energy levels. Higher dietary energy with lower protein levels resulted in higher HDL concentrations. Higher levels of energy and protein elevated serum total protein, globulin, and the activities of AST and ALT enzymes. Moreover, dietary lysine level affected villus height and surface area.
Conclusion: Overall, the results of the present study indicate that feeding more than 103% of metabolizable energy required may have detrimental effects on performance and feed intake. Whereas, increasing dietary protein up to 106% of the requirement improved performance; but since there was no significant difference in performance at 103% and 106% protein levels, 103% protein is economically recommended. Furthermore, for optimal performance in Arian broiler chickens, the recommended standard level of methionine+ cysteine and 103% of lysine requirements are also suggested.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Amino acid balance
  • Feed efficiency modeling. Growth performance indices
  • Nutrient optimization
  • Physiological response evaluation
مراجع
نیک‌خواه، علی و کاظمی شیرازی، رضا (1368)، روش علمی تغذیه مرغ، چاپ دوم، انتشارات دانشگاه تهران.
Reference
Aftab, U. (2019). Energy and amino acid requirements of broiler chickens: keeping pace with the enetic progress. World's Poultry Science Journal, 75(4), 507-514. https://doi.org/10.1017/S0043933919000564.
Akhlaghi, A., Zamiri, M. J., Ahangari, Y. J., Atashi, H., Pirsaraei, Z. A., Deldar, H., ... & Hashemi, S. R. (2013). Oral exposure of broiler breeder hens to extra thyroxine modulates early adaptive immune responses in progeny chicks. Poultry Science, 92(4), 1040-1049. https://doi.org/10.3382/ps.2012-02545.
Alabi, T., & Adedokun, S. (2025). Amino Acid Nutrition in Poultry: A Review. Animals , 15: 3323. https://doi.org/10.3390/ani15223323.
Ansaripoor, A., Sedghi, M., Sadeghi-Sefidmazgi, A., & Pilevar, M. (2020). Optimization of growth performance responses of Japanese quail with different concentrations of metabolizable energy, lysine, and sulfur amino acids using Taguchi method. Livestock Science, 241, 104234. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2020.104234.
Bouvarel, I., Chagneau, A. M., Lescoat, P., Tesseraud, S., & Leterrier, C. (2008). Forty-eight-hour cycle sequential feeding with diets varying in protein and energy contents: adaptation in broilers at different ages. Poultry Science, 87(1), 196-203. https://doi.org/10.3382/ps.2007-00205.
Choct, M. (2009). Managing gut health through nutrition. British Poultry Science, 50: 9-15. https://doi.org/10.1080/00071660802538632.
Cordero, P., Ramírez-Toloza, G., Dufflocq, P., Herrera-Alcaíno, S., & Guzmán-Pino, S.A. (2025). Reduced Dietary Protein and Essential Amino Acids Impair Growth Performance and Increase Lysine Sensitivity in Broiler Chickens. Animals, 15, 1027. https://doi.org/10.3390/ani15071027.
Dairo, F. A. S,. Adesehinwa, A. O. K., Oluwasola, T. A., & Oluyemi, J. A. (2010). High and low dietary energy and protein levels for broiler chickens. African Journal of Agricultural Research, 5, 2030-38. doi: 10.5897/AJAR10.254.
Dozier, W. A. Corzo, A., Kidd, M. T., & Schilling, M. W. (2008). Dietary digestible lysine requirements of male and female broilers from forty-nine to sixty-three days of age. Poultry Science Journal, 87, 1385-91. doi: 10.3382/ps.2007-00529. PMID: 18577620.
Ekim, B., Calik, A., Ceylan, A., & Saçaklı, P. (2020). Effects of Paenibacillus xylanexedens on growth performance, intestinal histomorphology, intestinal microflora, and immune response in broiler chickens challenged with Escherichia coli K88. Poultry Science, 99, 214-23. https://doi.org/10.3382/ps/pez460.
Fosoul, S. S., Ale Saheb, M., Toghyani, A., Gheisari, S. A., Tabeidiyan, M., Rzaei, M., &  Azarfar, A. (2016). Performance, immunity, and physiological responses of broilers to dietary energy and protein sequential variations. Poultry Science, 95, 2068-80. https://doi.org/10.3382/ps/pew084.
Ge, X. K., Wang, A. A., Ying, Z. X., Zhang, L. G., Su, W. P., Cheng, K., Feng, C. C., Zhou, Y. M., Zhang, L. L., & Wang, T. J. P. S. (2019). Effects of diets with different energy and bile acids levels on growth performance and lipid metabolism in broilers. Poultry Science, 98, 887-95. https://doi.org/10.3382/ps/pey434.
Ghoreyshi, S. M., Omri, B., Chalghoumi, R., Bouyeh, M., Seidavi, A., Dadashbeiki, M., Lucarini, M., Durazzo, A., van den Hoven, R., & Santini, A. (2019). Effects of dietary supplementation of l-carnitine and excess lysine-methionine on growth performance, carcass characteristics, and immunity markers of broiler chicken. Animals, 9, 362. https://doi.org/10.3390/ani9060362.
Golian, A., Azghadi, A., & Pilevar, M. (2010). Influence of various levels of energy and protein on performance and humoral immune responses in broiler chicks. Global Veterinaria, 4, 434-40.
Grasman, K. A. (2002). Assessing immunological function in toxicological studies of avian wildlife. Integrative and Comparative Biology, 42, 34-42. https://doi.org/10.1093/icb/42.1.34.
Gupta, S. Jindal, N., Khokhar, R. S., Gupta, A. K., Ledoux, D. R., & Rottinghaus, G. E. (2005). Effect of ochratoxin A on broiler chicks challenged with Salmonella gallinarum. British Poultry Science, 46, 443-50. https://doi.org/10.1080/00071660500190850.
Helkin, A., Stein, J. J., Lin, S., Siddiqui, S., Maier, K. G., & Gahtan, V. (2016). Dyslipidemia part 1-review of lipid metabolism and vascular cell physiology. Vascular and Endovascular Surgery, 50, 107-18. https://doi.org/10.1177/1538574416628654.
Houshmand, M., Azhar, K., Zulkifli, I., Bejo, M. H., & Kamyab, A. (2011). Effects of nonantibiotic feed additives on performance, nutrient retention, gut pH, and intestinal morphology of broilers fed different levels of energy. Journal of Applied Poultry Research, 20, 121-28. https://doi.org/10.3382/japr.2010-00171.
Hu, X., Li, X., Xiao, C., Kong, L., Zhu, Q., & Song, Z. (2021). Effects of dietary energy level on performance, plasma parameters, and central AMPK levels in stressed broilers. Frontiers in Veterinary Science, 8, 681858. https://doi.org/10.3389/fvets.2021.681858.
Incharoen, T., Yamauchi, K., Erikawa, T., & Gotoh, H. (2010). Histology of intestinal villi and epithelial cells in chickens fed low-crude protein or low-crude fat diets. Italian Journal of Animal Science, 9, e82. https://doi.org/10.4081/ijas.2010.e82.
Kamran, Z., Sarwar, M., Nisa, M. U., Nadeem, M. A., & Mahmood, S. (2010). Effect of low levels of dietary crude protein with constant metabolizable energy on nitrogen excretion, litter composition and blood parameters of broilers. International Journal of Agriculture and Biology, 12, 401-05.
Khwatenge, C. N., Kimathi, B. M., & Nahashon, S. N. (2020). Transcriptome analysis and expression of selected cationic amino acid transporters in the liver of broiler chicken fed diets with varying concentrations of lysine. International Journal of Molecular Sciences, 21, 5594. https://doi.org/10.3390/ijms21165594.
Kidd, M. T. (2004). Nutritional modulation of immune function in broilers. Poultry Science, 83, 650-57. https://doi.org/10.1093/ps/83.4.650.
Klasing, K. C. (2007). Nutrition and the immune system. British Poultry Science, 48, 525-37. https://doi.org/10.1080/00071660701671336.
Kwiterovich Jr, P. O. (2000). The metabolic pathways of high-density lipoprotein, low-density lipoprotein, and triglycerides: a current review. The American Journal of Cardiology, 86, 5-10. https://doi.org/10.1016/S0002-9149(00)01461-2.
Lamot, D. (2017). First week nutrition for broiler chickens: effects on growth, metabolic status, organ development, and carcass composition. Wageningen University and Research.
Leeson, S. U. O. G., Caston, L., & Summers, J. D. (1996). Broiler response to energy or energy and protein dilution in the finisher diet. Poultry Science, 75, 522-28. https://doi.org/10.3382/ps.0750522.
Leeson, S. (2001). Summers. JD (2001) Nutrition of the chicken. University books, Guelph.
Leterrier, C., Perrot, P., Favreau, F., Constantin, P., Bouvarel, I., Lessire, M., & Picard, M. (2006). Sequential feeding with low-and high-lysine diets increases activity and improves gait score in broiler chickens. Researchgate Net.
Leterrier, C., Vallée, C., Constantin, P., Chagneau, A. M., Lessire, M., Lescoat, P., & Berri, C., Baéza, E., Bizeray, D., & Bouvarel, I. (2008). Sequential feeding with variations in energy and protein levels improves gait score in meat-type chickens. Animal, 2, 1658-65. https://doi.org/10.1017/S1751731108002875.
Limdi, J. K., & Hyde, G. M. (2003). Evaluation of abnormal liver function tests. Postgraduate Medical Journal, 79, 307-12. https://doi.org/10.1136/pmj.79.932.307.
Maneewan, B., & Yamauchi, K. (2005). Recovery of duodenal villi and cells in chickens refed protein, carbohydrate and fat. British Poultry Science, 46, 415-23. https://doi.org/10.1080/00071660500158105.
Miller, G. J., & Miller, N. E. (1975). Plasma-high-density-lipoprotein concentration and development of ischaemic heart-disease. The Lancet, 305, 16-19. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(75)92376-4.
Mousa, M. A., Asman, A. S., Ali, R. M. J., Sayed, R. K. A., Majrashi, K. A., Fakiha, K. G., Alhotan, R. A., & Selim, S. (2023). Impacts of dietary lysine and crude protein on performance, hepatic and renal functions, biochemical parameters, and histomorphology of small intestine, liver, and kidney in broiler chickens. Veterinary Sciences, 10, 98. https://doi.org/10.3390/vetsci10020098.
Niu, Z., Shi, J., Liu, F., Wang, X., Gao, C., & Yao, L. (2009). Effects of dietary energy and protein on growth performance and carcass quality of broilers during starter phase. International Journal of Poultry Science, 8, 508-11.
Praharaj, N. K., Reddy, M. R., RamaRao, S. V., Shyamsunder, G., & Reddy, B. L. N. (1999). Energy by sire family interactions for growth, feed efficiency, immune competence in commercial broilers. Archiv für Geflügelkunde, 63, 82-86.
Prakatur, I., Miskulin, M., Pavic, M., Marjanovic, K., Blazicevic, V., Miskulin, I., & Domacinovic, M. (2019). Intestinal morphology in broiler chickens supplemented with propolis and bee pollen, Animals, 9, 301. https://doi.org/10.3390/ani9060301.
Prola, L., Nery, J., Lauwaerts, A., Bianchi, C., Sterpone, L., Marco, M., Pozzo, L., & Schiavone, A. (2013). Effects of N, N-dimethylglycine sodium salt on apparent digestibility, vitamin E absorption, and serum proteins in broiler chickens fed a high-or low-fat diet. Poultry Science, 92, 1221-26. https://doi.org/10.3382/ps.2012-02465.
Raghebian, M., Sadeghi, A. A., & Aminafshar, M. (2017). Impact of dietary energy density on the liver health of broilers exposed to heat stress and their performance during finisher period. Journal of Livestock Science, 8, 122-30.
Rajman, M., Juráni, M., Lamošová, D., Máčajová, M., Sedlačková, M., Košťál, L., Ježová, D., & Výboh, P. (2006). The effects of feed restriction on plasma biochemistry in growing meat type chickens (Gallus gallus). Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 145, 363-71. https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2006.07.004.
Rose, S. P., & Kyriazakis, I. (1991). Diet selection of pigs and poultry. Proceedings of the Nutrition Society, 50, 87-98. https://doi.org/10.1079/PNS19910014.
Rosebrough, R. W., & Steele, N. C. (1985). Energy and protein relationships in the broiler: 1. Effect of protein levels and feeding regimens on growth, body composition, and in vitro lipogenesis of broiler chicks. Poultry Science, 64, 119-26. https://doi.org/10.3382/ps.0640119.
Roy, R.K., (2010). A primer on the Taguchi method. Society of manufacturing engineers.
Sarrami, Z., Sedghi, M., Mohammadi, I., Bedford, M., Miranzadeh, H., & Ghasemi, R. (2023). Effects of bacteriophage on Salmonella Enteritidis infection in broilers. Scientific Reports, 13, 12198. https://doi.org/10.1038/s41598-023-38791-6.
Sedghi, M., Golian, A., Esmaeilipour, O., & Van Krimpen, M. M. (2014). Application of the Taguchi method in poultry science: estimation of the in vitro optimum intrinsic phytase activity of rye, wheat and barley. British Poultry Science, 55, 246-52. https://doi.org/10.1080/00071668.2014.883460.
Sellaoui, S., Alloui, N., Mehenaoui, S., & Djaaba, S. (2012). Evaluation of immune status of the chicken using morphometry and histology of the bursa of fabricius. Journal of Advanced Veterinary, 2, 440-43.
Shazali, N., Loh, T. C., Foo, H. L., & Samsudin, A. A. (2019). Gut microflora and intestinal morphology changes of broiler chickens fed reducing dietary protein supplemented with lysine, methionine, and threonine in tropical environment. Revista Brasileira de Zootecnia, 48, e20170265. https://doi.org/10.1590/rbz4820170265.
Sigolo, S., Zohrabi, Z., Gallo, A., Seidavi, A., & Prandini, A. (2017). Effect of a low crude protein diet supplemented with different levels of threonine on growth performance, carcass traits, blood parameters, and immune responses of growing broilers. Poultry Science, 96, 2751-60. https://doi.org/10.3382/ps/pex086.
Siri-Tarino, P. W. (2011). Effects of diet on high-density lipoprotein cholesterol. Current Atherosclerosis Reports, 13, 453-60. https://doi.org/10.1007/s11883-011-0207-y.
Tasaki, I., & Yanaka, M. (1981 (Effect of dietary sulfur amino acids deficiency on the energy metabolism in the chick. Japanese Journal of Zootechnical Science, 51, 632-637.
Zhang, Y. N., Wang, S., Deng, Y. Z., Huang, X. B., Li, K. C., Chen, W., Ruan, D., Xia, W. G.,  Wang, S. L., & Zheng, C. T. (2021). The application of reduced dietary crude protein levels supplemented with additional amino acids in laying ducks. Poultry Science, 100, 100983. https://doi.org/10.1016/j.psj.2021.01.006.
Zhang, Y. N., Xu, R. S., Min, L., Ruan, D., Kim, H. Y., Hong, Y. G., Chen, W., Wang, S., Xia, W. G., & Luo, X. (2019). Effects of L-methionine on growth performance, carcass quality, feather traits, and small intestinal morphology of Pekin ducks compared with conventional DL-methionine. Poultry Science, 98, 6866-72. https://doi.org/10.3382/ps/pez438.
تولیدات دامی
دوره 28، شماره 2
تیر 1405
صفحه 215-232
فایل ها
هم رسانی
ارجاع به این مقاله
آمار